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研究背景
WHO1997年报告1995年全世界有糖尿病患者1.25亿,并预计2025年将达2.99亿,而新增加的患者主要集中在中国等发展中国家。糖尿病已成为世界第5位死亡主因,并且还可能引发多种并发症,因此吸引了众多的中外学者对其发病机理和治疗方法的研究。糖尿病有明显的遗传倾向并存在显著遗传异质性。除少数患者是由于单基因突变所致外,大部分1型糖尿病(胰岛素依赖性糖尿病,insulin-dependent diabetes mellitus,IDDM)及2型糖尿病(非胰岛素依赖性,non-insulin-dependent diabetes mellitus,NIDDM)患者是多基因及环境因子共同参与及相互作用引起的多因子病(也称为复杂病)
1型糖尿病其发病机制主要是由于遗传以及环境因素中病毒、化学物质所致的胰岛β细胞自身免疫性疾病(Ⅳ型超敏反应引起),t辅助细胞(Th)分为Th1和Th2两个亚型,分别促进细胞免疫和体液免疫,细胞因子(cytokine,CK)对Th1/Th2比例的调节作用与IDDM有关。病毒、化学物质及死亡的β细胞被巨噬细胞吞噬,产生Th1刺激因子(IL-12),使Th1占优势,继而IL-2和IFN-γ,在胰岛局部促进炎性细胞浸润并释放IL-1β、TNF-α、TNF-β、IFN-γ及自由基NO、H2O2-、O2-,杀伤少量β细胞。这些β细胞以自身抗原被提呈给Th,产生针对胰岛β细胞的抗体(ICA)、谷氨酸脱羧酶(GAD)抗体、INS自身抗体及酪氨酸磷酸酶抗体等,释放CK,募集更多的炎性细胞,放大β细胞损伤效应,使血浆中的胰岛素(insulin,INS)水平下降,最终导致IDDM。

2型糖尿病过去研究,主要与INS分泌缺陷、肝糖(HGO)输出增多和周围胰岛素抵抗(IR)等因素有关,现在研究发现它还与多种基因突变有关。(1)胰岛β细胞的葡萄糖转运蛋白2(Glucose Transporter2,GluT2)在使细胞内外葡萄糖快速平衡中起重要作用,它保证了胰岛β细胞感受葡萄糖刺激、应答分泌INS。β细胞的葡萄糖敏感性异常与GluT2缺失程度相关联,这种缺失包括GluT2基因突变和翻译错误等。(2)糖原合成酶(GS)是糖原合成的限速酶,基因定位在19q13.3。对GS的生化和遗传学研究表明,INS对GS的活化障碍NIDDM胰岛素抵抗的主要原因;对GS基因多态性与NIDDM群体关联性研究、家系连锁分析及GS基因的分子扫查表明,GS基因与部分种族NIDDM的发病密切相关,GS基因变异提高了人群NIDDM易感性,GS基因突变可能NIDDM的病因之一。(3)胰高血糖素受体(GCG-R)基因突变也是2型糖尿病原因之一。突变产物Ser40 GCG-R与胰高血糖素(GCG)亲和力较Gly40 gCG-R降低三倍,而使肝糖输出降低,并参与介导INS分泌的下调。如下图所示。

特异性糖尿病共有8种,多数临床表现为1型糖尿病及2型糖尿病,其中由单基因突变所致的有:(1)胰岛素基因(INS-G)突变性糖尿病:iNS-G位于第11号染色体短臂的1区5带(11P1.5),它的突变导致两种临床类型:高胰岛素血症型和高胰岛素原血症型。变异INS的生物活性低,不能循正常途径代谢,半衰期延长,而血中浓度增高。我国检出的第一例突变为B25(TTC→TTG)苯丙→亮。血浆INS水平与靶细胞上INSR数量相关联。在高胰岛素血症时,INSR数量减少,INS调节作用增强;若因基因突变INSR缺陷,而不能与INS结合,同时使细胞内合成代谢不能进行,发生INS抵抗,胰岛β细胞代偿性地分泌大量INS,形成高胰岛素血症,由此形成恶性循环。最终使胰岛β细胞功能衰竭,导致糖尿病。(2)胰岛素受体基因(INSR-G)突变性糖尿病:iNSR是由2个α亚基和2个β亚基组成的四聚体糖蛋白,α亚基位于细胞膜,富含Cys,可特异识别并结合INS;β亚基穿过质膜,具有胞内近膜区、PTK活性Q区和C端的自身磷酸化位点。与INS结合后,首先自身酪氨酸磷酸化,然后PTK被激活,继而通过多条信号途径,引起多种生物效应。iNSR-G位于19P13.2~1.3,其突变多为点突变,少数为拼接错误和缺失,引发INSR功能异常,使之不能介导INS的作用,产生靶细胞对INS的抵抗。(3)葡萄糖转运蛋白基因(GluT-G)突变性糖尿病:gluT是结构相似功能不同的多基因(GluT1-gluT4)家族,GluT-G的突变影响糖代谢的进行,使胰岛β细胞分泌INS能力降低,肌肉、脂肪和肝脏组织利用葡萄糖的能力降低,外周组织产生INS抵抗而导致糖尿病。glu-7基因突变可致GluT2表达减少或产生异常GluT2,使胰岛β细胞对循环血糖水平的敏感性下降,INS分泌减少。而GluT4-G突变所致的GluT4表达减少或异常GluT4合成,可引起周围组织INS抵抗。另外,GluT1和GluT4有限制性片段长度多态性(RECP)变化。

糖尿病机理过去多为糖的定性临床状态与DNA位点研究,现在是基因与定量中间性状,尤其是胰岛β细胞分泌功能、周围组织INS敏感性、体脂含量及分布相关研究增多。对于易感位点的研究过去多用群体相关途径和家系连锁途径,较新为家系内联分析方法和邻位表达序列标签(EST),但较多用的是全基因组随即化位点标记ASP分析,但多结合相关途径进行复核及定位克隆。糖尿病机理研究和方法研究还在进一步的发展中。

研究模型

我们已经掌握了胰岛β细胞的原代分离培养:采用医用复方氯化钠注射液经胰总管灌注大鼠胰腺,0.5 mg/mLⅤ型胶原酶消化后,分别采用浓度为27.0%、23.0%、20.5%和11.0%的Ficoll 400形成不连续密度梯度介质,离心纯化胰岛细胞。如下图所示。

我们建立了葡萄糖刺激胰岛素释放实验模型:RPMI1640培养基培养3 d后,分别用低糖和高糖行葡萄糖刺激胰岛素释放实验检测胰岛细胞功能。如下图所示。

研究案例
目的:探讨酒精对胰岛细胞分泌胰岛素功能的影响及对胰岛细胞凋亡的影响
结论:酒精对胰岛细胞胰岛素分泌的影响与酒精作用时间、剂量有关。低剂量短时间作用,胰岛素分泌量增加,但随着酒精作用时间的延长及酒精剂量的增加,胰岛细胞功能受损,胰岛素分泌减少;酒精通过诱导胰岛细胞凋亡使胰岛细胞功能障碍可能是酒精导致糖尿病发生的重要机制之一。
路线::
  • 建立大鼠胰岛的原代培养方法
  • 观察不同剂量酒精作用不同时间后葡萄糖刺激的胰岛素分泌情况,从而揭示酒精对胰岛细胞分泌胰岛素功能影响的规律
  • 检测酒精对INS、COX II表达的影响 观察酒精对胰岛细胞凋亡的影响
  • 从氧化应激的角度探讨酒精诱导胰岛细胞凋亡机制:检测脂质过氧化及抗氧化指标MDA/GSH/SOD/GSH-Px,检测Bcl2/Bax/Caspase3基因表达
核心文献
  • Genetic predisposition for beta cell fragility underlies type 1 and type 2 diabetes. Nat Genet. 2016 Mar 21;ng.3531.
  • p16(Ink4a)-induced senescence of pancreatic beta cells enhances insulin secretion. Nat Med. 2016 Mar 7;nm.4054. 10.1038/nm.4054. http://dx.doi.org/10.1038/nm.4054
  • SerpinB1 Promotes Pancreatic β Cell Proliferation. Cell Metab. 2015 Dec 14;S1550-4131(15)00616-6. http://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S1550-4131(15)00616-6
  • TCF1 links GIPR signaling to the control of beta cell function and survival. Nat Med. 2015 Dec 7;nm.3997.
  • Pancreatic β cell enhancers regulate rhythmic transcription of genes controlling insulin secretion. Science. 2015 Nov 6;350(6261):aac4250.

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